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  • 评价纳米载体对免疫细胞(DC、巨噬细胞、T 细胞)的激活与细胞因子分泌,支持免疫治疗研究。
    技术要点
    • 细胞来源:小鼠骨髓来源 DC(BMDC)、外周血单核细胞或细胞系。
    • 成熟标志物:CD80/CD86/MHC-II/CD40 等流式检测。
    • 细胞因子谱:TNF-α、IL-6、IL-12、IFN-γ 等。
    • T 细胞活化:混合淋巴细胞反应、增殖与活化标志。
  • 以 qPCR、Western Blot 等手段检测纳米药物对细胞基因与蛋白表达的影响。
    技术要点
    • 引物/抗体验证:确保特异性和扩增/结合效率。
    • 内参与重复:设置内参基因与生物学重复(n ≥ 3)。
    • 定量分析:ΔΔCt 法或灰度定量。
    • 通路检测:检测凋亡、增殖、免疫等相关标志物。
  • 体外评价纳米药物的细胞毒性/药效,测定 IC50、凋亡与活死状态,比较游离药与载药体系。
    技术要点
    • 细胞模型:选择靶细胞与正常细胞对照,评估选择性。
    • 浓度梯度:设置合理梯度以准确拟合 IC50。
    • 时间点:24/48/72 h 评价时效关系。
    • 对照设计:空白载体、游离药、载药载体、联合用药。
  • 定量测定药物进入细胞的数量与入胞机制,评价载体的胞内递送效率。
    技术要点
    • 洗脱彻底:充分洗涤去除胞外游离药物,避免高估。
    • 定量方法:荧光/HPLC/LC-MS/MS,需方法学验证(线性、回收率)。
    • 归一化:以蛋白量或细胞数校正,保证可比性。
    • 机制实验:多种内吞抑制剂 + 低温对照。
  • 以共聚焦荧光显微镜观察载体与药物的细胞内定位与分布,直观呈现靶向结合与入胞过程。
    技术要点
    • 多色标记:载体、细胞器与细胞核分别用不同荧光通道,避免光谱串扰。
    • 孵育时间梯度:观察入胞与胞内转运过程。
    • 共定位分析:定量计算与溶酶体/线粒体等的共定位程度。
    • 三维成像:Z-stack 重建反映空间分布。
  • 以流式细胞术定量分析纳米载体对靶细胞的识别、结合与摄取,比较靶向与对照细胞、竞争抑制。
    技术要点
    • 荧光标记策略:包载荧光染料或荧光标记配体,注意标记对靶向性的影响。
    • 孵育条件:时间、温度(4 ℃ 抑制内吞以区分结合 vs 摄取)、浓度。
    • 对照设计:受体阴性细胞、游离配体竞争、未修饰载体对照。
    • 数据指标:平均荧光强度(MFI)、阳性细胞比例、摄取抑制率。
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